寧軍1，李 娜 2、嚴雨倩2，付 麟2，周興華2

　　

　?。?.廣東精捷檢驗檢測有限公司，廣東云浮 527400;2.江蘇大學食品與生物工程學院，江蘇鎮江 212013）

　　

　　摘 要∶本文對氯霉素進行丁二酸酐衍生得到半抗原，將半抗原與載體蛋白 BSA偶聯作為免疫原，氯霉素與偶連載體蛋白 0VA作為篩選抗原，獲得氯霉素單克隆抗體，IC。值為0.010 6 ng/mL，線性范圍為 0.002 3～0.0495 ng/mL，特異性好，與相關藥物沒有交叉。在此抗原抗體的基礎上制備膠體金試紙條，對雞肉樣本進行添加回收試驗，消線法檢測限為0.1μg/kg，與目前市場上主流的比色法判讀試紙條相比，消線法判讀更加快速，不需要使用讀數儀輔助判讀，為農產品質量安全提供有力保障。

　　

　　關鍵詞∶氯霉素;單克隆抗體;膠體金免疫層析試紙條;消線法;檢測

　　

　　氯霉素(Chloramphenicol, CAP)是一種廣譜抗生素，對 革蘭氏陰性菌和革蘭氏陽性菌均有抑制作用。長期食用含有 氯霉素的雞肉組織會擾亂人體正常的生理功能，引起再生障 礙性貧血。農業部第250號公告中明確規定氯霉素及其鹽、 酯在動物性食品中禁止使用，所以測定動物組織中氯霉素殘 留含量具有重要的意義。目前動物性食品中氯霉素殘留檢測 方法有免疫分析方法、質譜法等。免疫學方法是農產品中抗 生素殘留檢測中最重要的檢測技術之一，具有成本低、操作 簡便、快速等優點，不需要輔助儀器，更適合大量樣本的初 篩檢測。目前市場上的氯霉素試紙條，靈敏度不夠高，基本 上都是釆用比色判讀方法，試紙條上控制線和檢測線差異不 大，判讀結果爭議較大。本研究制備的氯霉素試紙條，靈敏 度高，可以釆用消線法判讀，判讀更加快速、準確，為農產 品質量安全提供有力保障『％

　　

　　1材料與方法

　　

　　1.1試劑與藥品

　　

　　氯霉素標準品，購買自百靈威科技有限公司；牛血清白 蛋白(BSA)、水溶性碳二亞胺鹽酸鹽(EDC HCL)、N-羥 基琥珀酰亞胺(NHS)、3,3',5,5，-四甲基聯苯胺(TMB)、 弗氏完全佐劑、弗氏不完全佐劑、聚乙二醇溶液(50% PEG solution(w/v))、辣根過氧化酶(HRP)標記的羊抗鼠二抗、 羊抗鼠抗體IgG購買自武漢博士德公司；新西蘭胎牛血清， 細胞基礎培養液RPMI 1640,選擇性培養基HAT(50x)、 HT(100x),購買自Gibco公司；膠體金試紙條底板(PVC 材質)，硝酸纖維素膜(NC膜)，吸水墊和樣品墊均購買 自Goldbio科技有限公司；其他實驗室常用試劑均為國產分 析純，購自上海國藥集團化學試劑有限公司；陰性雞肉樣本 由溫氏集團檢測中心提供。

　　

　　1.2儀器與設備

　　

　　臺式高速(冷凍)離心機，湘儀儀器；高壓蒸汽滅菌鍋 (MLS-375 1L-PC),松下健康醫療器械株式會社；磁力攪 拌器(Big Squid),德國IKA；純水機(20 TB),賽飛(中國) 有限公司；液氮罐，成都金鳳液氮容器有限公司；酶標儀、 3111型加水套CO2培養箱、紫外-可見分光光度計Biomate 3S, Thermo Fisher Sciencetific 公司潔凈工作臺(BCM-1300A), 蘇凈安泰空氣技術有限公司；數顯恒溫水浴鍋(HH-2),江 蘇金怡儀器科技有限公司；倒置顯微鏡(XD-202),南京江 南永新光學有限公司；金標滑膜儀、切條機，上海金標生物 科技有限公司。

　　

　　1.3實驗動物和細胞

　　

　　實驗動物：SPF級BALB/c小鼠，6 ~ 8周齡，雌性， 揚州大學醫學中心；實驗細胞：SP 2/0細胞，中國科學院上 海生命科學研究院。

　　

　　1.4試驗方法

　　

　　1.4.1半抗原衍生

　　

　　氯霉素分子表面有兩個自由羥基，一個伯羥基，一個仲 羥基。伯羥基可以與丁二酸酊反應生成梭酸，可與蛋白偶連。 5.5 mg氯霉素溶解于0.5mLtt®中，加入4.2mgDMAP 與2 mg 丁二酸酊，50P磁力攪拌反應4h,得到衍生產物 CAP-COOH.將反應產物氮吹干，溶解于水中并使用二氯 甲烷萃取2次，將二氯甲烷相合并，氮氣吹干，得到目標產 物曠71。衍生步驟如圖1所示。

　　

　　1.4.2完全抗原的合成

　　

　?。?） 免疫原合成方法。2 mg的CAP-COOH半抗原溶解 于400 hL DMF溶液中，加入1.1 mg NHS與1.8 mg碳二亞 胺EDC,室溫條件下磁力攪拌反應2 h,得到活性酯。隨后 將活性酯逐滴加到5 mg BSA溶液中，室溫磁力攪拌過夜。 將最終產物裝入透析袋中，在0.05 mol/L PBS溶液中透析 3d,每4?8h更換一次透析液。透析結束后分裝小份， -20 °C保存[8_10]o

　　

　?。?） 包被原合成方法。氯霉素上游離的羥基通過CDI法 與蛋白偶聯，3 mg CAP溶解于0.5 mL無水DMSO試劑中， 加入2mgCDL室溫磁力攪拌反應20 min。向反應液中加 入100 uL超純水終止反應。隨后將活化產物逐滴加到5 mg OVA蛋白溶液，室溫條件下磁力攪拌反應4 h。偶聯產物在 0.05 mol/L PBS溶液中透析3d,每4?8h更換一次透析 液凹。透析結束后分裝小份，-20 P保存。

　　

　　1.4.3小鼠免疫及血清篩選

　　

　　使用合成的完全抗原CAP-COOH-EDC-BSA作為免疫 原進行小鼠免疫實驗，CAP-CDI-OVA作為包被原進行篩選 實驗。每個免疫原選取4 H BALB/c小鼠進行免疫。釆用間 接競爭ELISA方法[12-13]測定小鼠血清效價與抑制效果，具 體步驟如下。

　　

　?。?） 包板。用包被緩沖液將包被原（CAP-CDI-OVA）稀釋 到適宜濃度，加入到96孔酶標板（100 J1L/孔）中，37。（2下 孵育2h。孵育結束后甩出酶標板中液體，加入洗滌緩沖液 （含 0.05% 吐溫 20 的 0.01 mol/L PBS, 200 gL/ 孔），靜止 3 min后甩出，拍干，重復洗滌3次，拍干。

　　

　?。?） 封閉。每孔中加入200 gL封閉液，4。（3過夜，洗滌 液改為250pL洗滌3次，拍干。

　　

　?。?） -抗。使用棋盤法同時測定小鼠的血清效價與抑 制。使用洗滌緩沖液作為陰性對照（50 nL/孔）,檢測組加 入適宜濃度的標準品溶液（50 jxL/孔）。處理好的小鼠血清從 1 000倍用抗體稀釋液進行梯度稀釋（1 000> 3 000> 9 000> 27 000倍），分別對應加入對照組與檢測組中，37P下孵 育30tnm,洗滌3次同上，拍干。

　　

　?。?） 二抗。將HRP二抗用洗滌緩沖液稀釋3 000倍，然 后每孔加入100 gL,37 °C下反應30 min,洗滌3次同上，拍干。

　　

　?。?） 顯色。使用前將A液與B液按1 ： 1配制，混勻后 加入酶標板（100 pL/孔）,37 °C下避光顯色15 min。

　　

　?。?） 終止。酶標板中每孔加入50 nL終止液，使用酶標 儀測量450 nm、620 nm下吸光值，最終結果按照OD頌皿- OD620mn保存數據。

　　

　　1.4.4細胞融合及抗體制備

　　

　　篩選效果較好的小鼠進行細胞融合試驗。①SP 2/0細胞 的復蘇與擴大培養；②小鼠脾臟細胞融合。小鼠脾細胞與 SP2/0細胞混合均勻，比例為5 : 1,釆用PEG 1500進行 細胞融合試驗；③雜交瘤細胞的培養與篩選。細胞融合后第 7 d進行細胞上清檢測，挑選OD值高，抑制率高的孔進行 亞克隆，使用有限稀釋法進行3次亞克隆，挑選出單團雜交 瘤細胞轉移至培養瓶中進行擴大培養，最后轉移至液氮儲存 箱中保存叫

　　

　　釆取體內誘生腹水瘤法制備細胞株腹水抗體，再使用辛 酸-硫酸鉉法進行抗體純化[11]=

　　

　　1.4.5單克隆抗體的評價

　　

　　釆用間接競爭法，分別測定所制備單克隆抗體對氯霉素 與其結構類似物（氟苯尼考、甲硯霉素）的值。交叉反 應率（Cross-reactivity, CR, %）=（氯霉素 /C50 值 / 類似物

　　

　　值）xi00%[6113]o

　　

　　1.4.6膠體金試紙條的制備

　　

　　按照檸檬酸三鈉還原法制備金納米粒子，釆用O.lmol/L 碳酸鉀溶液進行抗體標記，標記量分別為6 pg/mL、8 gg/mL, 10 p.g/mL 和 12 pg/mL, 10% BSA 封閉，0.01 mol/L pH 8.5 硼酸緩沖液（含0.25% BSA, 3%海藻糖，1%吐溫20）復溶， 按照50 nL每孔加入到微孔板中，凍干，密封保存。

　　

　　試紙條主要由PVC底板，NC膜，樣品墊和吸水紙組成。 將羊抗鼠抗體（靠吸水紙端）和抗原（靠樣品墊端）按照一定的 濃度劃到硝酸纖維膜上，分別構成試紙條質控線（C線）和檢 測線（T線）,隨后將試紙條在37P下烘箱中烘干過夜us， 在靠近C端貼上吸水紙，靠近T線端貼好樣品墊。切成4 mm 寬度。檢測時，將待檢測液體加入微孔中，反應3 min后， 插入試紙條，5mhi后判讀。

　　

　　1.4.7添加回收試驗

　　

　　對雞肉陰性樣本進行氯霉素添加回收試驗。陰性對照組 添加不含標準品空白溶劑作為對照。具體操作如下：取4g 均質后的樣品，添標濃度分別為0、0.05 pg/kg、0.10 gg/kg 和0.20 gg/kg,加入7 mL乙酸乙酯，劇烈振蕩5 min, 4 000轉離心5 min。取4mL上清，氮氣65。（3吹干后，再 加入2 mL正己烷和0.4 mL 0.01 mol/L PBS,振蕩1 min,離 心3 min,去除上層，取下層溶液100 gL點樣。

　　

　　2結果與分析

　　

　　2.1完全抗原的合成與表征

　　

　　氯霉素半抗原、載體蛋白（BSA和OVA）及合成的免疫 抗原和包被抗原分別使用0.01 moVL PBS稀釋至合適的濃 度，使用紫外-可見分光光度計在200?450 nm范圍內進 行掃描，結果如圖2所示。

　　

　　如圖2所示，兩種載體蛋白的紫外特征峰均位于278 nm 左右，偶聯物CAP-COOH-EDC-BSA紫外吸收較同濃度的 BSA有明顯增強且有略微偏移。同樣，偶聯物CAP-CDI- OVA紫外吸收較同濃度OVA也有明顯增強，紫外表征結果 顯示氯霉素半抗原成功的與載體蛋白進行了偶聯。

　　

　　2.2單克隆抗體的評價

　　

　　通過對小鼠血清進行ELISA檢測，篩選效價高、抑制 率高的小鼠進行細胞融合實驗。通過陽性篩選與3次亞克隆, 得到針對氯霉素的雜交瘤細胞株（6E2）,并制取腹水，純 化后得到氯霉素單克隆抗體[11]

　　

　　釆用棋盤法，篩選出氯霉素單克隆抗體的最佳工作點， 即包被濃度0.03卩g/mL、抗體濃度0.25卩g/mL,然后以不同 濃度的氯霉素標準品溶液(0、0.003 ng/mL、0.010 ng/mL、 0.030 ng/mL、0.090 ng/mL 和 0.270 ng/mL)建立標準曲線， 其標準曲線如圖3所示，其云爲值為0.010 6 ng/mL,線性 范圍CIG。?IC80)為0.002 3?0.049 5 ng/mL,相關系數 為 0.999 Oo

　　

　　通過ic-ELISA方法測定氯霉素單克隆抗體的交叉反應， 檢測結果如表1所示，氯霉素單克隆抗體具有特異性，對氟 苯尼考和甲颯霉素交叉均在1%以下。

　　

　　2.3膠體金試紙條的制備

　　

　　使用不同包被濃度和抗體標記量進行試驗，確定最優條 件C線劃膜濃度為0.5 mg/mL、T線劃膜濃度為0.2 ing/mL 和抗體標記量為10|ig/mL。如圖4所示，使用肉眼觀察時， 氯霉素金標試紙條消線值為0.1卩g/kg。

　　

　　2.4實際樣本添加回收試驗

　　

　　采用以上前處理方法，使用陰性樣品添加試驗確定該 方法靈敏度。4種陰性雞肉樣品氯霉素添加水平為0、0.05g/kg、0.10μg/kg、0.20 μg/kg。結果如圖5所示，使用肉

　　

　　眼觀察時，氯霉素消線法的檢測限為0.1 μg/kg。

　　

　　3 結論

　　

　　本文采用一種完全抗原對小鼠進行免疫，成功制備了一種氯霉素單克隆抗體，ICso值為0.0106ng/mL,特異性好，與相關藥物沒有交叉。在此抗原抗體的基礎上制備膠體金試紙條，對雞肉組織樣本做了添加回收試驗，消線法檢測限為0.1 μg/kg,該方法成本低、靈敏度好、操作方便快速，判讀方式簡單，對雞肉中氯霉素殘留的監控有重要意義。

　　

　　參考文獻

　　

　　王安偉，劉天密，覃銳，等.水產品中氯霉素殘留檢測方法研究進展[J],食品安全質量檢測學報,2017,8(11):42594264.

　　

　　[2]蔡夢迪，蔡波，鄭添裕.食品中殘留氯霉素的檢測方法 研究[J].科技風,2015(12):138-139.

　　

　　[3]蔣定國，楊大進.動物性食品中氯霉素殘留檢測技術的 研究概況(綜述)[J],中國食品衛生雜志,2002,14(2):44-47.

　　

　　[4]李曉川，孔軼群，冷凱良，等.水產品中氯霉素殘留測 定方法的分析研究[J],漁業科學進展＞2002,23(4):76-81.

　　

　　[5]趙文亞，沈美芳，徐幸蓮，等.氣相色譜法測定水產品 中氯霉素殘留[J].水產學報,200327(3):278-282.

　　

　　[6]覃雅麗，石德時，王桂枝，等.抗氯霉素單克隆抗體的 制備及鑒定[J],中國獸醫學報,2001(6):556-558.

　　

　　[7]方偉，姜有聲，黃宣運，等.氯霉素單克隆抗體的研制 及其特性分析[C]//全國水產青年學術年會.2009.

　　

　　[8]XU NjXU L,MA Wet aLDevelopment and characterisation of an ultrasensitive monoclonal antibody for chloramphenicol[J].Food Agricultural Immunolog^2015^6(3):440-450.

　　

　　[9]LIU C,DENG D,XU D,et al.Development of a monoclonal antibody based-ELISA for the detection of chloramphenicol in shrimp,feed and milk samples and validation by LC-MS/ MS coupled with immuno affinity clean-up[ J] .Analytical Methods^019,l 1(4):507-516.

　　

　　[10]何佳琪，段振娟，張燕，等.氯霉素殘留ELISA檢測 方法[J],中國獸醫雜志＞2008,44(2):88-89.

　　

　　[11]孔德昭.食品中真菌毒素抗體制備及其快速檢測方法 研究[D],無錫：江南大學,2017:1.

　　

　　[12]徐修遠.氯霉素抗體的制備與間接競爭ELISA檢測 氯霉素殘留的初步研究[D],沈陽：沈陽農業大學,2004.

　　

　　[13]蔣永青，朱永利，王甜甜，等.氯霉素抗體的制備及其 免疫分析方法研究進展[J].廣東化工,2017,44(22):97-98.

　　

　　[14]孔令文.氯霉素側流層析免疫檢測技術研究[D],舟山： 浙江海洋學院2012.

　　

　　[15]王瑋.氯霉素殘留快速檢測膠體金試紙，條的研究[D]. 天津:天津科技大學＞2008.

　　

　　[16]李余動，張少恩，吳志剛，等.膠體金免疫層析法快速 檢測氯霉素殘留[J].中國食品衛生雜志,2005,17(5):416419.